Ознакомительная версия.
Отсутствие желчи В наблюдается в следующих случаях:
1) закупорка пузырного протока камнем или новообразованием;
2) нарушение сократительной способности желчного пузыря вследствие воспалительных изменений;
3) потеря желчным пузырем способности концентрировать желчь вследствие воспалительных изменений;
4) отсутствие «пузырного» рефлекса, т. е. опорожнения желчного пузыря в ответ на введение общепринятых раздражителей.
V фаза – «печеночная» желчь С – желчь, попадающая в двенадцатиперстную кишку в период зондирования. Отражает состояние мелких желчных путей внутри печени.
Микроскопическое исследование
Микроскопическое исследование необходимо проводить сразу же после получения дуоденального содержимого. Желчь из пробирки выливают в чашку Петри и рассматривают на белом и черном фоне. Пастеровской пипеткой вылавливают хлопья слизи, переносят их на предметное стекло, накрывают покровным и изучают под микроскопом (окуляр 10х, объектив 40х).
В разных порциях желчи возможно выявление слизи, лейкоцитов, кристаллов холестерина, билирубина, билирубината кальция, эпителиальных клеток. В норме клеточные элементы либо отсутствуют, либо встречаются единичные лейкоциты, эритроциты.
Лейкоциты
Большое количество лейкоцитов в порциях В и С может указывать на наличие воспалительного процесса в желчевыводящих путях (холецистит, холецистохолангит). Также возможно их внежелчное происхождение (примесь желудочного и панкреатического соков, миграция из слизистой оболочки двенадцатиперстной кишки – пищевой лейкопедез).
Эпителиальные клетки
Наличие большого количества круглых эпителиальных клеток в порциях В и С (лейкоцитоидов) может быть обусловлено патологическими изменениями в двенадцатиперстной кишке, влиянием вводимых желчегонных средств (сернокислой магнезии). Обнаружение цилиндрических эпителиальных клеток является более диагностически значимым для верификации воспаления желчных путей.
Обнаружение в дуоденальном содержимом кристаллических и аморфных осадочных образований желчи указывает на то, что она потеряла свою коллоидную стабильность. Причиной появления их может быть воспалительный процесс в желчных путях, нарушение коллоидной стабильности в результате длительного стояния или попадания в желчь желудочного содержимого. Диагностическое значение имеют следующие кристаллические образования: микролиты, кристаллы холестерина, желчные и жирные кислоты, билирубинат кальция.
Микролиты – темноватые, округлые или многогранные компактные образования, иногда имеющие концентрическую исчерченность; состоят из извести, слизи и небольшого количества холестерина.
Кристаллы холестерина – тонкие, бесцветные четырехугольные пластинки, иногда с «обломанным» углом. Билирубинат кальция представляет собой аморфные крупинки бурого, черного, коричневого или золотисто-желтого пигмента. Часто встречается в сочетании с кристаллами холестерина.
Кристаллы жирных кислот
Нежные, тонкие, бесцветные иглы, превращающиеся при подогревании нативного препарата на пламени спиртовки в капли, имеют диагностическое значение только при исключении попадания в желчь желудочного содержимого.
Простейшие и гельминты
Исследование дуоденального содержимого рекомендуется проводить при подозрении на гельминтозы печени и желчного пузыря (описторхоз, фасциолез, клонорхоз, дикроцелиоз) и двенадцатиперстной кишки (стронгилоидоз, трихостронгилоидоз). Из простейших в дуоденальном содержимом чаще всего определяются лямблии.
Бактериологическое исследование желчи проводится для определения состава микрофлоры и чувствительности ее к антибиотикам.
Биохимическое исследование желчи дает представление о концентрационной функции желчного пузыря и коллоидальной устойчивости желчи, а также о наличии воспалительного процесса. В связи с этим производят определение билирубина, холестерина, желчных кислот, липидных комплексов, белка, СРБ. Чаще всего эти исследования проводятся в научных целях. Однако высокая распространенность желчнокаменной болезни в мире требует решения проблемы диагностики этого заболевания на ранней физико-химической стадии его развития.
Исследование мокроты
Характеристика трахеобронхиального секрета
Одним из основных защитных барьеров бронхов является слизь – трахеобронхиальный секрет, покрывающий эпителий дыхательной трубки. Она рассматривается как постоянно восстанавливающийся фильтр, способствующий удалению ингалированных частиц, в том числе и микроорганизмов.
Одновременно слизь представляет собой среду, в которой действуют системы специфической и неспецифической иммунологической защиты и находятся клетки «быстрого реагирования». Под влиянием различных механизмов, и прежде всего в результате деятельности реснитчатого эпителия, трахеобронхиальный секрет перемещается от мельчайших бронхов до трахеи и глотки, чем обеспечивает мукоцитарный клиренс – выведение из респираторного тракта ингалированных частиц, бактерий и продуктов метаболизма. Основной источник бронхиального секрета – секреторный эпителий серозных и слизистых желез трахеи, крупных бронхов и бокаловидные клетки, а также клетки Клара. Кроме того, в состав бронхиального секрета входят сурфактант альвеол, составные части плазмы крови, попадающие туда в процессе экссудации или транссудации, и секретируемые местно белки, а также продукты дегенерации и распада микроорганизмов и собственных тканей. Особое значение имеют протеолитические системы, входящие в состав трахеобронхиального секрета. Изменения в трахеобронхиальном секрете при наличии различных видов воспаления носят защитно-приспособительный характер, направлены прежде всего на уменьшение интенсивности повреждающего воздействия. Патологический характер процесс приобретает тогда, когда мера защиты превышена и извращена. При воспалительном процессе в составе трахеобронхиального секрета происходят изменения, приводящие к изменению их реологических свойств, отмечается увеличение вязкости пропорционально тяжести течения заболевания. Таким образом, мокрота – патологический продукт, выделяемый больными при различных заболеваниях дыхательной системы. Состав мокроты определяется патофизиологическими механизмами, характерными для того или иного заболевания, видом воспаления, соотношением дистрофических и репаративных процессов.
Сбор мокроты
Для большинства исследований мокрота собирается утром натощак (до завтрака). Чтобы предотвратить примешивание к мокроте содержимого полости рта, перед выделением мокроты больной должен тщательно прополоскать рот кипяченой водой. При наличии зубных протезов рекомендуется полоскание 1 %-ным раствором алюмокалиевых квасцов, вяжущее действие которых предупреждает попадание в мокроту ороговевшего плоского эпителия. Затем следует глубокое откашливание. Для усиления выработки трахеобронхиального секрета перед сбором мокроты рекомендуется проведение ингаляций 10 %-ного раствора хлорида натрия, 1–3 %-ного раствора йодида калия. Пробы нужно собирать в пригодный для стерилизации герметичный контейнер с завинчивающейся крышкой. Исследуется мокрота в первые 2–3 ч после выделения. Взятие мокроты у детей можно производить следующим образом: рот ребенка удерживается открытым при помощи шпателя. Чтобы вызвать кашель, находят надгортанник (за корнем языка) и прикасаются к нему тампоном на стержне. Материал из трахеи откашливается на тампон, и его можно использовать для исследования. При исследовании мокроты на микобактерии туберкулеза используется биоматериал, собранный в течение суток, или утренняя мокрота. Если мокроту невозможно исследовать сразу, то хранить ее следует в холодильнике или прохладном месте. В качестве консерванта может быть использован 3 %-ный раствор борной кислоты, который добавляется к мокроте в равном объеме и перемешивается. Для обеззараживания мокроты и посуды, в которой она находилась, используют 5 %-ный раствор хлорамина.
Макроскопическое исследование
Проба мокроты переносится в стерильную чашку Петри, распределяется тонким слоем, рассматривается невооруженным глазом или с помощью лупы на темном фоне (рис. 28).
Рис. 28. Исследование мокроты а – в поле зрения: клетки плоского и цилиндрического эпителия, эритроциты, лейкоциты; б – эластические волокна в мокроте; в – макрофаги альвеолярные, содержащие гемосидерин (окраска на берлинскую лазурь; г – микобактерии туберкулеза в мокроте (окраска по Цилю – Нильсену)
Количество Объем отделяющейся за сутки мокроты колеблется в широких пределах: от 10 до 100 мл. Для определения количества выделенной за сутки мокроты ее собирают, а затем выливают в градуированную стеклянную посуду. У пациентов с хроническим бронхитом, абсцессами легкого или бронхиальной астмой изменение суточного объема мокроты часто указывает на ухудшение или улучшение состояния.
Ознакомительная версия.
